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當前位置:首頁產品中心生化檢測試劑盒-常量法抗氧系列BC0170-50T/24S超氧化物歧化酶(SOD)活性檢測試劑盒 抗氧

超氧化物歧化酶(SOD)活性檢測試劑盒 抗氧
產品簡介:

儲存條件
2-8℃
中文名稱
超氧化物歧化酶(SOD)活性檢測試劑盒 抗氧
有效期
6個月
單位

英文名稱
Superoxide Dismutase(SOD) Activity Assay Kit
檢測方法
可見分光光度法 Spectrophotometer
規格
50T/24S

產品型號:BC0170-50T/24S

更新時間:2025-08-28

廠商性質:生產廠家

訪 問 量 :7292

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產品介紹

超氧化物歧化酶(SOD)活性檢測試劑盒 抗氧


超氧化物歧化酶(SOD)活性檢測試劑盒說明書 詳見附件
可見分光光度法
注意:本產品試劑有所變動,請注意并嚴格按照該說明書操作。
貨號:BC0170
規格:50T/24S
產品組成:使用前請認真核對試劑體積與瓶內體積是否一致,有疑問請及時聯系索萊寶工作人員。

試劑名稱規格保存條件
提取液液體60 mL×1瓶2-8℃保存
試劑一液體15 mL×1瓶2-8℃保存
試劑二液體160 μL×1支2-8℃保存
試劑三液體11 mL×1瓶2-8℃保存
試劑四液體0.5mL×1支2-8℃保存

溶液的配制:

  1. 試劑二:使用前先使用掌上離心機離心至管底再吹打混勻;

  2. 試劑二工作液:根據樣本數量按試劑二:蒸餾水=30μL:270μL(共300μL,約5S)的比例配制試劑二工作液,現用現配;

  3. 試劑四工作液:根據樣本量按試劑四:蒸餾水=60μL:240μL(共300μL,約10T)的比例配制試劑四工作液,現用現配。


SOD(EC 1.15.1.1)是一種廣泛存在于生物體內的金屬酶,是重要的氧自由基清除劑,能催化超氧化物陰離子發生歧化作用,生成H2O2和O2。SOD不僅是超氧化物陰離子清除酶,也是H2O2主要生成酶,在生物抗氧化系統中具有重要作用。
通過*及*氧化酶反應系統產生超氧陰離子(O2-),O2-可還原氮藍四唑生成藍色甲臜,后者在560nm處有吸收;SOD可清除O2-,從而抑制了甲臜的形成;反應液藍色越深,說明SOD活性愈低,反之活性越高。血清或者SOD酶活小的樣本更適合使用BC5160超氧化物歧化酶(SOD)活性檢測試劑盒(WST-1法)進行測定。
注意:實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。
需自備的儀器和用品:
可見分光光度計、臺式離心機、可調式移液器、1mL玻璃比色皿、研缽/勻漿器/細胞超聲破碎儀、冰和蒸餾水。

一、樣本處理(可適當調整待測樣本量,具體比例可以參考文獻)

  1. 細菌或細胞樣本:收集細菌或細胞到離心管內,離心后棄上清,按照細菌或細胞數量(104個):提取液體積(mL)為500-1000:1的比例(建議500萬細菌或細胞加入1mL提取液),超聲波破碎細菌或細胞(冰浴,功率200W,超聲3s,間隔10s,重復30次),8000g 4℃離心10min,取上清,置冰上待測。

  2. 組織樣本:按照組織質量(g):提取液體積(mL)為1:5-10的比例(建議稱取約0.1g組織,加入1mL提取液),進行冰浴勻漿;8000g 4℃離心10min,取上清,置冰上待測。

  3. 血清(漿)樣本:直接檢測。

二、測定步驟

  1. 分光光度計預熱30min以上,調節波長至560nm,蒸餾水調零。

  2. 臨用前根據樣本數量取部分試劑一、試劑三和試劑四工作液37℃水浴5min以上。

  3. 樣本測定(在EP管中加入下列試劑)

試劑名稱(μL測定管對照管空白管1空白管2
樣 本9090--
試劑一240240240240
試劑二工作液60-60-
試劑三180180180180
蒸餾水400460490550
試劑四工作液30303030

充分混勻,37水浴30min后,置于1mL玻璃比色皿測定560nm下的吸光度,分別記為A測定、A對照、A1空白A2空白,計算ΔA測定=A測定-A對照,ΔA空白=A1空白-A2空白。如底部有沉淀,混勻后再行測定。(空白管1和空白管2各只需做1~2管,每個樣本有一個對照管)

  • SOD活性計算

1、抑制百分率的計算:抑制百分率=(ΔA空白-ΔA測定) ÷ΔA空白× 100%
盡量使樣本的抑制百分率在30-70%范圍內,越靠近50%越準確。如果計算出來的抑制百分率小于30%或大于70%,則通常需要調整加樣量后重新測定。如果測定出來的抑制百分率偏高,則需適當稀釋樣本;如果測定出來的抑制百分率偏低,則需重新準備濃度比較高的待測樣本或者提高操作表中樣本體積,同時減少相同的蒸餾水體積。
2、SOD酶活性單位:在上述*氧化酶偶聯反應體系中抑制百分率為50%時,反應體系中的SOD酶活力定義為一個酶活力單位。
3、SOD酶活性計算:
(1)血清(漿)SOD活性(U/mL)=[抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V反總]÷V×F
=11.11×抑制百分率÷(1-抑制百分率)×F
(2)組織、細菌或培養細胞SOD活力計算:

  1. 按樣本蛋白濃度計算

SOD活性 (U/mg prot)=[抑制百分率÷1-抑制百分率)×V反總V×Cpr×F
=11.11×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷Cpr×F

  1. 按樣本質量計算

SOD活性 (U/g 質量)=[抑制百分率÷(1 -抑制百分率)×V反總]÷(W×V÷V樣總)×F
=11.11×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W×F

  1. 按細菌或細胞數量計算

SOD活力 (U/104 cell)= [抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V反總]÷(N×V÷V樣總)×F
=11.11×抑制百分率÷(1-抑制百分率)×F÷N
V反總:反應體系總體積,1 mLV樣:加入反應體系中樣本的體積,0.09mLV樣總:加入提取液體積,1mLCpr:樣本蛋白質濃度,mg/mLW:樣本質量,gN:細胞或細菌總數,以萬計;F:樣本稀釋倍數。
注意事項:

  1. 樣本和試劑二工作液使用時在冰上放置。

  2. 樣本較多時,可按表格配制測定管工作液和對照管工作液(包含試劑一、(試劑二工作液)、試劑三、蒸餾水),試劑四工作液必須最后加入。

  3. 反應完成后,可能有沉淀生成,混勻后測定即可。

實驗實例:

  1. 取0.1g綠蘿葉片加入1mL提取液進行勻漿研磨,取上清之后按照測定步驟操作,測得計算ΔA測定=A測定-A對照=0.532-0.085=0.447ΔA空白=A1空白-A2空白=0.853-0.002=0.851抑制百分率=(ΔA空白-ΔA測定) ÷ΔA空白×100%=47.5%按樣本質量計算酶活得:

SOD活性 (U/g 質量)= 11.11×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W=100.5U/g 質量。

  1. 取0.1g小鼠腎臟加入1mL提取液進行勻漿研磨,取上清之后按照測定步驟操作,測得計算ΔA測定= A測定-A對照=0.608-0.109=0.499ΔA空白=A1空白-A2空白=0.853-0.002=0.851抑制百分率=(ΔA空白-ΔA測定) ÷ΔA空白× 100% =41.4%按樣本質量計算酶活得:

SOD活性 (U/g 質量)= 11.11×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W=78.5U/g 質量。

  1. 取1000萬細胞,加入1mL提取液提取離心,之后再按照測定步驟操作,測得計算ΔA測定=A測定-A對照=0.614-0.015=0.599ΔA空白=A1空白-A2空白=0.853-0.002=0.851抑制百分率=(ΔA空白-ΔA測定) ÷ΔA空白× 100% =29.6%細菌或細胞數量計算酶活得:

SOD活性 (U/104 cell)=抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V反總 ÷(1000×V÷V樣總)=0.0046U/104 cell。
相關發表文獻:

  1. Beibei Li,Yang Ding, Xiuli Tang, et al. Effect of L-Arginine on Maintaining Storage Quality of the White Button Mushroom (Agaricus bisporus). Food and Bioprocess Technology. April 2019; 12:563-574.(IF3.032)

  2. Yanan Wang,Cheng zhen Liang,Zhigang Meng, et al. Leveraging Atriplex hortensis choline monooxygenase to improve chilling tolerance in cotton. Environmental and Experimental Botany. June 2019; 162: 364-373. (IF3.712)

  3. Yang Yang,Li Jing,Wei Cong, et al. Amelioration of nonalcoholic fatty liver disease by swertiamarin in fructose-fed mice. Phytomedicine. June 2019;59. (IF4.18)

  4. Siyang Yu,Bo Dong, Zhenfei Fang, et al. Knockdown of lncRNA AK139328 alleviates myocardial ischaemia/reperfusion injury in diabetic mice via modulating miR-204-3p and inhibiting autophagy. Journal of Cellular and Molecular Medicine. July 2018;(IF4.658)

  5. Qilong Wang, Guosheng Xiao, Guoliang Chen, et al. Toxic effect of microcystin-LR on blood vessel development. Toxicological & Environmental Chemistry. February 2019;(IF3.547)

參考文獻:

  1. Spitz D R, Oberley L W. An assay for superoxide dismutase activity in mammalian tissue homogenates[J]. Analytical Biochemistry, 1989, 179(1):8-18.

  2. Masayasu M, Hiroshi Y. A simplified assay method of superoxide dismutase activity for clinical use[J]. Clinica Chimica Acta, 1979, 92(3):337-342.

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