丙酮酸激酶（PK）活性檢測試劑盒說明書

微量法

注意：本產品試劑有所變動，請注意并嚴格按照該說明書操作。

貨號：BC0545

規格：100T/96S

產品組成：使用前請認真核對試劑體積與瓶內體積是否一致，有疑問請及時聯系索萊寶工作人員。

溶液的配制：

1、 試劑二A：臨用前加入1.2mL蒸餾水，用不完的試劑可-20℃分裝保存4周，避免反復凍融；

2、 試劑二B：臨用前取1支加入0.645mL蒸餾水，用不完的試劑可-20℃分裝保存4周，避免反復凍融；

3、 試劑二C：臨用前加入1.2mL蒸餾水，用不完的試劑可-20℃分裝保存4周，避免反復凍融；

4、 工作液的配制：根據樣本按試劑一：試劑二A：試劑二B：試劑二C= 750μL：50μL：50μL：50μL（5T）的比例配制，現用現配；

5、 試劑三：臨用前根據用量按照試劑三:蒸餾水=5μL:295μL（30T）的比例充分混勻，冰上放置備用，現用現配。

產品說明：

PK（EC 2.7.1.40）廣泛存在于動物、植物、微生物和培養細胞中，催化糖酵解過程中的最后一步反應，是糖酵解過程中的主要限速酶之一，也是產生ATP的關鍵酶之一，因此測定PK活性具有重要意義。

PK催化磷酸烯醇式丙酮酸和ADP生成ATP和丙酮酸，乳酸脫氫酶進一步催化NADH和丙酮酸生成乳酸和NAD⁺，在340nm下測定NADH下降速率，即可反映PK活性。

注意：實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內建議稀釋或者增加樣本量進行檢測。

需自備的儀器和用品：

紫外分光光度計/酶標儀、臺式離心機、水浴鍋/恒溫培養箱、可調式移液器、微量石英比色皿/96孔UV板、研缽/勻漿器/細胞超聲破碎儀、冰和蒸餾水。

操作步驟：

一、樣本處理（可適當調整待測樣本量，具體比例可以參考文獻）

1. 細菌或培養細胞：先收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；按照細菌或細胞數量（10⁴個）：提取液體積（mL）為500-1000：1的比例（建議500萬細菌或細胞加入1mL提取液），超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率200W，超聲3s，間隔10s，重復30次）；8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。

2. 組織：按照組織質量（g）：提取液體積（mL）為1:5-10的比例（建議稱取約0.1g組織，加入1mL提取液），進行冰浴勻漿；8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。

3. 血清（漿）等其他液體：直接檢測。若有沉淀請離心后取上清待測。

二、測定步驟

1、 紫外分光光度計/酶標儀預熱30min以上，調節波長至340nm，分光光度計蒸餾水調零。

2、 工作液臨用前于37℃預熱10min。

3、 加樣表：

將上述試劑按順序加入微量石英比色皿或96孔UV板中，立即充分混勻后于340nm處測定20s時的吸光值A1，迅速置于37℃準確反應2min（酶標儀有控溫功能可將溫度調至37℃），拿出迅速擦干測定2min20s時的吸光值A2。計算ΔA=A1-A2。

三、PK活性計算

A． 用微量石英比色皿測定的計算公式如下：

1、 按液體體積計算

單位的定義：每毫升液體每分鐘消耗1nmol NADH定義為一個酶活力單位。

PK活性（U/mL）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×10⁹] ÷V樣÷T=1608×ΔA

2、 按樣本蛋白濃度計算

單位的定義：每 mg 組織蛋白每分鐘消耗1nmol NADH定義為一個酶活力單位。

PK活性（U/mg prot）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×10⁹] ÷(Cpr×V樣)÷T=1608×ΔA ÷Cpr

3、 按樣本質量計算

單位的定義：每 g 組織每分鐘消耗1nmol NADH定義為一個酶活力單位。

PK活性（U/g 質量）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×10⁹] ÷(W×V樣÷V樣總)÷T=1608×ΔA ÷W

4、 按細菌或細胞數量計算

單位的定義：每 1 萬個細菌或細胞在反應體系中每分鐘消耗1nmol NADH定義為一個酶活力單位。

PK活性（U/10⁴ cell）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×10⁹] ÷(500×V樣÷V樣總)÷T=3.216×ΔA

V反總：反應體系總體積，2×10^-4L；ε：NADH摩爾消光系數，6.22×10³L/mol/cm；d：比色皿光徑，1 cm；V樣：加入樣本體積，0.01mL；V樣總：加入提取液體積，1mL；T：反應時間，2min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本質量，g；500：細菌或細胞總數，500萬。

B． 用96孔UV板測定的計算公式如下：

1、 按液體體積的計算

單位的定義：每毫升液體每分鐘消耗1nmol NADH定義為一個酶活力單位。

PK活性（U/mL）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×10⁹] ÷V樣÷T=2680×ΔA

2、 按樣本蛋白濃度計算

單位的定義：每mg組織蛋白每分鐘消耗1nmol NADH定義為一個酶活力單位。

PK活性（U/mg prot）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×10⁹] ÷(Cpr×V樣)÷T=2680×ΔA ÷Cpr

3、 按樣本質量計算

單位的定義：每g組織每分鐘消耗1nmol NADH定義為一個酶活力單位。

PK活性（U/g 質量）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×10⁹] ÷(W×V樣÷V樣總)÷T=2680×ΔA ÷W

4、 按細菌或細胞數量計算

單位的定義：每1萬個細菌或細胞在反應體系中每分鐘消耗1nmolNADH定義為一個酶活力單位。

PK活性（U/10⁴ cell）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×10⁹] ÷(N×V樣÷V樣總)÷T=2680×ΔA÷N

V反總：反應體系總體積，2×10^-4L；ε：NADH摩爾消光系數，6.22×10³L/mol/cm；d：96孔板光徑，0.6cm；V樣：加入樣本體積，0.01mL；V樣總：加入提取液體積，1mL；T：反應時間，2min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本質量，g；N：細菌或細胞總數，以萬計。

注意事項：

1．測定過程中試劑三、樣本在冰上放置，以免變性和失活。

2．比色皿中反應液的溫度盡量保持37℃，取小燒杯一只裝入一定量的37℃蒸餾水，將此燒杯放入37℃水浴鍋中。在反應過程中把比色皿連同反應液放在此燒杯中。或酶標板放入37℃恒溫培養箱中孵育。

3．最好兩個人同時做此實驗，一個人比色，一個人計時，以保證實驗結果的準確性。

實驗實例：

1. 稱取約0.1g 鼠肝，加入1mL提取液，進行冰浴勻漿，8000g，4℃離心10min，取上清置冰上待測。之后按照測定步驟操作，用1mL微量石英比色皿測得計算A1=0.726，A2=0.243，ΔA=A1-A2=0.483，計算丙酮酸激酶活性得：  PK活性（U/g 質量）=2680×ΔA÷W=12944.4U/g 質量

相關發表文獻：

[1] Liu Y, Liang X, Zhang G, et al. Galangin and pinocembrin from propolis ameliorate insulin resistance in HepG2 cells via regulating Akt/mTOR signaling[J]. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine, 2018, 2018.

[2] Zhou F, Du J, Wang J. Albendazole inhibits HIF-1α-dependent glycolysis and VEGF expression in non-small cell lung cancer cells[J]. Molecular and cellular biochemistry, 2017, 428(1-2): 171-178.

參考文獻：

[1] Lepper T W, Oliveira E, Koch G D W, et al. Lead inhibits in vitro creatine kinase and pyruvate kinase activity in brain cortex of rats[J]. Toxicology in Vitro, 2010, 24(3): 1045-1051.

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