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當前位置:首頁產品中心生化檢測試劑盒-常量法輔酶Ⅱ系列BC1165-100T/96S谷*甘肽還原酶(GR)活性檢測試劑盒 輔酶系

谷*甘肽還原酶(GR)活性檢測試劑盒 輔酶系
產品簡介:

儲存條件
2-8℃
谷*甘肽還原酶(GR)活性檢測試劑盒 輔酶系
有效期
6個月
單位

推薦
若使用96孔板測定,需使用96孔UV板,推薦貨號YA0602
英文名稱
Glutathione Reductases(GR) Activity Assay Kit
別名
谷*甘肽還原酶試劑盒 GR Kit 谷*甘肽還原酶(GR)試劑盒 谷*甘肽還原酶(GR)測試盒
檢測方法
微量法 Spectrop

產品型號:BC1165-100T/96S

更新時間:2024-04-10

廠商性質:生產廠家

訪 問 量 :2134

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產品介紹


谷*甘肽還原酶(GR)活性檢測試劑盒說明書
微量法
注意:本產品試劑有所變動,請注意并嚴格按照該說明書操作。
貨號:BC1165
規格:100T/96S
產品組成:使用前請認真核對試劑體積與瓶內體積是否一致,有疑問請及時聯系索萊寶工作人員。

試劑名稱規格保存條件
試劑一液體125 mL×1瓶2-8℃保存
試劑二粉劑×12-8℃保存
試劑三粉劑×12-8℃保存

溶液的配制:

  1. 試劑二:臨用前加入1.5mL蒸餾水溶解備用,2-8℃可保存4周;

  2. 試劑三:試劑存于試劑瓶內玻璃瓶中;臨用前加入3 mL蒸餾水溶解備用,-20℃可分裝保存4周,避免反復凍融。

產品說明:
GR(EC1.8.1.7Glutathione ReductaseGR是廣泛存在于真核和原核生物中的一種黃素蛋白氧化還原酶,GR是 谷*甘肽氧化還原循環的關鍵酶之一(通常昆蟲中GR被TrxR取代)。GR催化NADPH還原*生成GSH,有助于維持體內GSH/*比值。GR在氧化脅迫反應中對活性氧清除起關鍵作用,此外GR還參與抗壞血酸- 谷*甘肽循環途徑。
GR能催化NADPH還原*再生GSH,同時NADPH脫氫生成NADP+;NADPH在340nm有特征吸收峰,相反NADP+在該波長無吸收峰;通過測定340nm吸光度下降速率來測定NADPH脫氫速率,從而計算GR活性。
注意:實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內建議稀釋或者增加樣本量進行檢測。
需自備的儀器和用品:
紫外分光光度計/酶標儀、低溫離心機、水浴鍋/恒溫培養箱、移液器、勻漿器/研缽/細胞超聲破碎儀、微量石英比色皿/96孔UV板、冰和蒸餾水。
操作步驟:
一、樣本處理(可適當調整待測樣本量,具體比例可以參考文獻)

  1. 組織:按照組織質量(g):試劑一體積(mL)15~10的比例(建議稱取約0.1g組織,加入1mL試劑一)進行冰浴勻漿。10000rpm4℃離心10min,取上清置冰上待檢測。

  2. 細菌、細胞:按照細胞數量(104個):試劑一體積(mL)為500~10001的比例(建議500萬細胞加入1mL試劑一),冰浴超聲波破碎細胞(功率300w,超聲3s,間隔7s,總時間3min),然后10000rpm4℃,離心10min,取上清置于冰上待測。

  3. 血清(血漿)等液體:直接測定。

二、測定步驟

  1. 分光光度計或酶標儀預熱30 min以上,調節波長到340nm,蒸餾水調零。

  2. 根據樣本量取部分試劑一置于37℃中預熱15min以上。

  3. 操作表:(在微量石英比色皿或96孔UV板中加入下列試劑)

試劑名稱(μL測定管空白管
試劑二1010
試劑三2020
樣本20-
試劑一150170
將上述試劑分別加入微量石英比色皿或96孔板后迅速吹打混勻,記錄第10s340nm的吸光值A1A1),迅速置于37℃水浴或培養箱3min(酶標儀有控溫功能的可以調節溫度至37℃),拿出迅速擦干測定3min10s時的吸光值A2A2),計算ΔA空白管=A1-A2ΔA測定管=A1-A2
    空白管只需測1-2次。

三、GR活性計算
a.使用微量石英比色皿測定的計算公式如下
(1)按樣本蛋白濃度計算
活性單位定義:在37℃,pH 8.0條件下,每毫克蛋白每分鐘催化1μmol NADPH氧化為一個酶活力單位。
GR酶活(U/mg prot)= [ (ΔA測定管-ΔA空白管)÷(ε×d)×V反總×106] ÷(Cpr×V樣)÷T
=0.536×(ΔA測定管-ΔA空白管)÷Cpr
(2)按樣本質量計算
活性單位定義:在37℃,pH 8.0條件下,每克樣本每分鐘催化1μmol NADPH氧化為一個酶活力單位。
GR酶活(U/g 質量)= [ (ΔA測定管-ΔA空白管)÷(ε×d)×V反總×106] ÷(V樣÷V樣總×W)÷T
=0.536×(ΔA測定管-ΔA空白管)÷W
(3)按細胞數量計算
活性單位定義:在37℃,pH 8.0條件下,每104個細胞每分鐘催化1μmol NADPH氧化為一個酶活單位。
GST活性(U/104 cell)=[ (ΔA測定管-ΔA空白管ε×d×106×V反總]÷(N×V÷V樣總)÷T
    =0.536×(ΔA測定管-ΔA空白管)÷N
(4)按液體體積計算
活性單位定義:在37℃,pH 8.0條件下,每毫升液體每分鐘催化1μmol NADPH氧化為一個酶活單位。
GST活性(U/mL)= [(ΔA測定管-ΔA空白管ε×d×106×V反總]÷V÷T
= 0.536×(ΔA測定管-ΔA空白管)
εNADPH摩爾消光系數6.22×103L/mol/cm;d:比色皿光徑,1cmV反總:反應體系總體積,200μL=2×10-4L;106:單位換算系數,1mol=1×106μmolCpr:上清液蛋白濃度,mg/mLW:樣本質量,gV樣:加入反應體系中的樣本體積,20μL=2×10-2mL;V樣總:樣本總體積,1mLT:反應時間,3min;N:細胞數量,以萬計。
b.使用96孔板測定的計算公式如下
(1)按蛋白濃度計算
活性單位定義:在37℃、pH 8.0條件下,每毫克蛋白每分鐘催化1μmol NADPH氧化為一個酶活力單位。
GR酶活(U/mg prot)=[ (ΔA測定-ΔA空白)÷(ε×d)×V反總×106]÷(Cpr×V樣)÷T
   =0.893×(ΔA測定管-ΔA空白管)÷Cpr

(2)按樣本質量計算
活性單位定義:在37℃、pH 8.0條件下,每克樣本每分鐘催化1μmol NADPH氧化為一個酶活力單位。
GR酶活(U/g質量)=[(ΔA測定管-ΔA空白管)÷(ε×d)×V反總×106]÷(V樣÷V樣總×W)÷T
          =0.893×(ΔA測定管-ΔA空白管)÷W
(3)按細胞數量計算:
活性單位定義:在37℃、pH 8.0條件下,每104個細胞每分鐘催化1μmol NADPH氧化為一個酶活單位。
GST活性(U/104 cell)=[ (ΔA測定管-ΔA空白管ε×d×106×V反總]÷(N×V÷V樣總)÷T
    =0.893×(ΔA測定管-ΔA空白管)÷N
(4)按液體體積計算
活性單位定義:在37℃、pH 8.0條件下,每毫升液體每分鐘催化1μmol NADPH氧化為一個酶活單位。
GST活性(U/mL)= [(ΔA測定管-ΔA空白管ε×d×106×V反總]÷V÷T
= 0.893×(ΔA測定管-ΔA空白管)
εNADPH摩爾消光系數6.22×103L/mol/cm;d96孔板光徑,0.6cmV反總:反應體系總體積,200μL=2×10-4L;106單位換算系數,1mol=1×106μmolCpr:上清液蛋白濃度,mg/mLW:樣本質量,gV樣:加入反應體系中的樣本體積,20μL =2×10-2mL;V樣總:樣本總體積,1mL;T:反應時間,3minN:細胞數量,以萬計。
注意事項:

  1. 樣本處理等過程均需要在冰上進行,且須在當日測定酶活力,勻漿液避免反復凍融;

  2. 測定前須先用1-2個樣做預實驗,哺乳動物組織一般須用試劑一稀釋2-5倍;

  3. 由于試劑一中含有一定濃度的蛋白(約0.1mg/mL),所以在測定樣本蛋白濃度時需要減去試劑一本身的蛋白含量。

實驗實例:

  1. 取0.1g桃樹葉片加入1.0 mL試劑一,冰上充分研磨,10000rpm 4℃離心10min,取上清液稀釋4倍后按測定步驟檢測,用微量石英比色皿測得ΔA測定管=A1-A2=1.0765-0.626=0.4505ΔA空白管=A1-A2=0,按樣本質量計算酶活得:

GR酶活(U/g 質量)=0.536×(ΔA測定管-ΔA空白管)÷W×4(稀釋倍數)=9.66 U/g 質量。

  1. 取0.1g大鼠肝臟組織加入1.0 mL試劑一,冰上充分研磨,10000rpm 4℃離心10min,取上清液稀釋8倍后按測定步驟檢測,用微量石英比色皿測得ΔA測定管=A1-A2=0.9916-0.5632=0.4284ΔA空白管=A1-A2=0,按樣本質量計算酶活得:

GR酶活(U/g 質量)=0.536×(ΔA測定管-ΔA空白管)÷W×8(稀釋倍數)=18.37 U/g 質量。
相關發表文獻:

  1. Hua Li,Lanying Wang,Yanping Luo. Composition Analysis by UPLC-PDA-ESI (?)-HRMS and Antioxidant Activity Using Saccharomyces cerevisiae Model of Herbal Teas and Green Teas from Hainan. Molecules. October 2018;(IF3.06)

  2. Zeyong Zhang,Huanhuan Liu,Ce Sun,et al. A C2H2 zinc-finger protein OsZFP213 interacts with OsMAPK3 to enhance salt tolerance in rice. Journal of Plant Physiology.October 2018;(IF2.825)

  3. Li S, Tian Y, Wu K, et al. Modulating plant growth–metabolism coordination for sustainable agriculture[J]. Nature, 2018, 560(7720):595-600.

參考文獻:

  1. Demiral T, Türkan I. Comparative lipid peroxidation, antioxidant defense systems and proline content in roots of two rice culti vars differing in salt tolerance[J]. Environmental and experimental botany, 2005, 53(3): 247-257.

相關系列產品:
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