在使用PBS緩沖液的過程中，需要注意以下幾個方面以確保實驗的準確性和細胞培養的效果：

　　1.溶液狀態檢查

　　觀察外觀：使用前應仔細查看PBS溶液的狀態，如發現有微粒、渾濁、沉淀或顏色變化等異常情況，說明PBS可能已被污染或變質，應立即棄用，重新配制或更換新的PBS。

　　無菌性確認：細胞培養要求嚴格的無菌環境，PBS需經過嚴格的滅菌處理，如高壓蒸汽滅菌或0.22 μm濾膜過濾除菌。在使用過程中，要遵循無菌操作原則，避免PBS被微生物污染。打開的PBS溶液在使用時，應防止瓶口接觸到其他物品，使用后及時蓋緊瓶蓋。

　　2.PBS緩沖液pH值控制

　　范圍要求：良好的緩沖液通常要求pH值在7.2-7.4之間，以維持細胞的正常生理功能和活性。不同細胞類型對pH值的要求可能略有差異，例如哺乳動物細胞實驗常用此范圍內的pH值；昆蟲細胞適合用pH值在6.2-6.4之間且離子強度略低的緩沖液；植物細胞一般用pH值在5.8-6.0之間且離子強度較低的緩沖液。

　　精確調節：如果需要特定pH值，可以使用pH計測定溶液的pH值，并通過加入少量氫氧化鈉（NaOH）或鹽酸（HCl）微調至所需數值。

　　3.滲透壓匹配

　　相似性原則：滲透壓應在270-315 mOsm/kg H?O之間，與細胞內環境的滲透壓相似，防止細胞因滲透壓的改變而發生失水或吸水，從而保持細胞的正常形態和功能。

　　特殊需求調整：對于一些對滲透壓敏感的細胞或實驗，可能需要進一步優化PBS的配方來滿足特定的滲透壓需求。

　　4.PBS緩沖液溫度管理

　　預熱處理：PBS在使用前應平衡至合適的溫度，避免因溫度過低或過高對細胞造成刺激或損傷。如果是用于細胞培養相關的操作，建議PBS在使用前37℃水浴加熱，使其溫度與培養環境相近。

　　避免反復凍融：冷凍保存的PBS應避免反復凍融，因為這可能會導致PBS中的成分發生變化，影響其緩沖能力和離子平衡，進而影響細胞培養效果。可將PBS分裝成小份后冷凍，使用時取出一份解凍即可。

　　5.內毒素控制

　　低內毒素要求：內毒素含量需極低，一般要求內毒素≤0.5 EU/mL或更低，因為過高的內毒素可引發細胞的炎癥反應和其他不良影響，干擾細胞的正常代謝和實驗結果。

　　6.PBS緩沖液鈣鎂離子的影響

　　特殊實驗注意：一些實驗中，如細胞培養時，鈣離子和鎂離子可能會影響細胞的粘附和分化過程。因此，在需要這些離子的實驗中，應避免使用標準PBS或選擇特殊配方的PBS（無鈣鎂離子）。

　　7.緩沖能力的局限性

　　適用條件：盡管PBS具有良好的緩沖能力，但在強酸或強堿條件下，PBS的緩沖效果有限。如果實驗涉及極*pH值的環境，可能需要選擇其他更合適的緩沖液。